标本采集时间范文（精选11篇）
标本采集时间 第1篇
关键词：血液标本,采集时间,放置时间,凝血检验,血常规检验,影响
及时准确地检测患者相关指标有利于指导医生的决策, 从而采取有效积极的治疗方式, 针对患者的病情进行治疗[1]。凝血与血常规检验是临床上常用的检验指标, 深入了解影响其变化的因素, 对于保证检验指标的准确性具有重要意义[2]。本研究主要探讨标本采集、放置时间及方式对凝血与血常规检验结果的影响, 现报告如下。
1 资料与方法
1.1 一般资料
选取我院2015年5月—2015年10月期间招募的健康成年志愿者100例, 年龄18岁~38岁, 平均年龄 (26.53±3.62) 岁。所有志愿者均在知情同意下参加本次研究。
1.2 方法
血常规采集血液, 在压脉带扎好之后立即进行血液样本采集, 从进针时计时, 到第3 min采取血液完成之后解开压脉带。血常规测定标本即刻检验, 随后放置24 h再检验相关血常规指标。凝血常规检验时要同时采集2管血液, 一支血管离心后放置温室3 h, 另一支放置温室3 h后进行离心处理。
1.3 观察指标
分别比较不同标本采集、放置时间及方式对凝血与血常规的检验结果的影响。
1.4 统计学方法
采用SPSS18.0软件进行数据处理, 计量资料以±s表示, 采用t检验, P<0.05为差异具有统计学意义。
2 结果
2.1 标本采集时间对凝血检验结果的影响比较
压脉带即刻时间的活化部分凝血活酶时间、凝血原酶时间以及凝血酶时间明显高于压脉带3 min时, 差异显著 (P<0.05) ;纤维蛋白的比较差异无统计学意义 (P>0.05) 。见表1。
2.2 标本采集时间对血常规检验结果的影响比较
压脉带即刻水平的红细胞计数和血红蛋白水平低于压脉带使用3 min时;压脉带即刻时间红白细胞计数、血小板计数高于压脉带使用3 min时, 差异显著 (P<0.05) 。见表2。
2.3 离心前后放置时间对凝血检验结果的影响比较
离心前放置3 h活化部分凝血活酶时间、凝血酶时间、凝血原酶时间明显高于离心后放置3 h, 差异显著 (P<0.05) 。见表3。
2.4 标本放置时间对血常规检验结果的影响比较
标本放置即刻时红细胞计数以及血小板计数明显高于放置24 h;白细胞计数明显低于放置24 h, 差异显著 (P<0.05) 。见表4。
3 讨论
随着检验医学的发展, 检验科医生越来越重视相关检验指标的准确性。凝血与血常规检验作为临床上常规的检验指标, 是反映凝血功能状况的基本指标, 当患者病情危急时, 即使微小的误差都可能造成错误的临床决策, 导致不可逆的后果[3]。为更准确地反映患者的状况, 临床应使凝血与血常规检验结果更加准确。
本研究结果显示, 不同标本采集方式、放置时间及方式, 其凝血功能检验与血常规检验相比差异有统计学意义 (P<0.05) , 表明标本采集、放置时间及方式均会对凝血与血常规相关指标产生影响。其原因在于长时间的压脉带压迫将会导致部分血管损伤和血液浓稠, 血管损伤大量凝血因子进入血液, 导致凝血因子显著延长, 血液浓稠导致血小板及白细胞局部浓度降低。离心放置时间越长, 红细胞将会逐渐衰老、破裂, 并且导致血小板被消耗。
综上所述, 标本采集、放置时间及方式均会对凝血与血常规相关指标产生影响, 在实际操作中应控制其对指标影响, 以保证检验结果准确。
参考文献
[1]李嫦女, 郑桂君.血液标本采集及送检对生化检验结果的影响分析[J].中国基层医药, 2015, 23 (23) :3632-3635.
[2]刘晓婷, 兰亚婷, 向代军, 等.血常规和凝血检测在急性心肌梗死转归期中的临床意义[J].中国医学装备, 2016, 13 (3) :84-87.
标本采集习题 第2篇
一、填空题
1．标本的检验结果可反应机体正常的 现象和 改变，和临床其他检查配合，对、、起着重要作用。2．静脉血标本包括、、。
3．同时抽取多个项目的血标本时，应先注入，其次注入，动作需迅速准确。
4．动脉血标本采取法常用于作，穿刺部位多用 或 时采。
5．留取中段尿标本，应在病人 或 时采取标本。
6．粪隐血标本主要用于检查粪内肉眼不能观察到的。二．病例讨论题
王女士，40岁。近3个月来出现发热，体温38摄度左右，厌食，消瘦，体重已下将6千克。为明确诊断，需查血糖、肝功能、血培养。问：
（1）如何正确的留取血标本？（2）如何防止标本溶血？ 三．问答题
采集静脉血标本过程中应注意什么？
四、选择题
（一）A1／A2型题
1．需采集全血标本的检验项目是
A．血脂 B．血沉 C．乙肝两对半 D．血钠测定 E．肝功能 2．生化检验的血标本应在什么时候采集
A．清晨空腹 B．饭前半小时 C．饭后半小时 D．临睡前 E．没有时间限制
3．测血脂的标本应注人
A．清洁干燥试管内 B．无菌试管内 C．肝素抗凝管内 D．草酸钾抗凝管内 E．石蜡油试管内 4．同时抽取不同种类的血标本，注入试管内的顺序正确的是
A．干燥管→抗凝管→血培养瓶 B．干燥管→血培养瓶→抗凝管 C．抗凝管→血培养瓶→干燥管 D．血培养瓶→干燥管→抗凝管 E．血培养瓶→抗凝管→干燥管
5．下列有关血培养标本的叙述不正确的是
A．用于查找血液中致病菌 B．应在抗生素使用前采集
C．如已经使用抗生素,应在下次用药之前采集 D．培养瓶、瓶塞应保持干燥
E．严格无菌操作 6．采集便标本作血吸虫孵化检查时应
A．取全部粪便 B．取带脓血部分粪便 C．取带黏液部分粪便
D．取不同部位的粪便 E．取中央部分粪便 7．采集粪便标本查寄生虫时应
A．取全部粪便 B．取前段粪便 C．取边缘部位的粪便 D．取不同部位的粪便 E．取中央部分粪便 8．以下有关阿米巴原虫的标本应如何采集
A．排便于清洁便盆内，取不同部位粪便送检 B．排便于清洁便盆内，取中央部位粪便送检 C．排便于加温便盆内，取不同部位粪便送检 D．排便于加温的便盆内，连同便盆送检 E．排便于消毒便盆内，取不同部位粪便送检 9．以下用于固定痰内癌细胞的是
A．40％ 甲苯 B．10％ 甲醛 C．40％ 甲醛 D．10％ 甲苯 E．75％ 酒精
10．以下有关痰标本的采集不正确的是
A．痰常规标本应于清晨未进食前取 B．痰常规标本应用清水漱口后取 C．留24小时痰标本的时间为晨起7点第一口痰至次晨7点的所有痰 D．留24小时痰标本应留于清洁、干燥的容器内 E．注意不可将唾液、鼻涕混入痰标本内 11．采集痰培养标本时应用的漱口液是
A．生理盐水 B．呋喃西林 C．碳酸氢钠 D．醋酸溶液 E．朵贝尔液
12．血培养标本的取血量一般为
A．2ml B．5ml C．8m1 D．9ml E．10ml 13．王某，32岁，糖尿病肾病人院，留24小时尿标本作蛋白定量检查，总尿量为
2000ml，应在标本中加入
A．甲醛5～lOml B．稀盐酸5～lOml C．浓盐酸5～lOml D．甲苯200ml E．甲醛 200ml 14．李某，女性，13岁，怀疑亚急性细菌性心内膜炎，需采集标本做血培养时，取
血量为
A．1—3ml B．2—5ml C． 5一l0ml D．10—15ml E．15—18ml 15．张某，女性，5岁，白血病，化疗过程中因口腔溃疡需做咽拭子培养，采集标本部位应选
A．口腔溃疡面 B．两侧腭弓 C．舌根部 D．扁桃体 E．咽部 16．林某，男性，3岁，肛周奇痒，怀疑蛲虫感染，应如何采集标本检查蛲虫
A．取黏液或脓血部分粪便送检
B．直接排便于清洁便盆内，取不同部位粪便送检 C．直接排便于清洁便盆内，连同便盆送检
D．用无菌棉签插入肛门6—7cm，轻轻旋转取标本送检 E．晚睡觉前将透明胶带贴在肛门周围取标本
（二）A3／A4型题(1—3题共用题干)李某，2年前确诊心绞痛，今日午后无明显诱因出现心前区疼痛，疼痛剧烈，服硝酸甘油后不能缓解，急诊入院，医嘱要求查CPK。1．应何时取血
A．服药后两小时 B．即刻 C．晚饭前 D．睡前 E．晨起空腹 2．取血标本时，以下措施不正确的是
A．取血后回抽注射器活塞，防止血液凝固堵塞针头 B．采集后直接沿管壁注入干燥试管内 C．不可将泡沫注入试管内，防止溶血 D．标本应避免震荡，防止溶血 E．不可自输液肢体同侧取血
3．装送检血标本的试管外应贴标签，标签上应注明的内容不包括 A．床号 B．姓名 C．科室 D．取血量 E．送检目的(4—6题共用题干)王女士，1周来晨起眼睑浮肿，排尿不适，尿色发红，血压偏高，疑急性肾小球肾炎，需留12小时尿做爱迪计数。4．为了防止尿液久放变质，应在尿液中加人
A．甲醛 B．稀盐酸 C．浓盐酸 D．乙酚 E．乙醛 5．如留取尿液600ml，应加防腐剂的量为
A．60ml B．30ml C．5ml D．20滴 E．10滴 6．加入防腐剂的目的是
A．防止尿中激素被氧化 B．防止细菌污染 C．防止尿液挥发 D．保持尿液的酸性环境 E．固定尿中有机成分(7—9题共用题千)王某，男45岁，大便不成形，排便形态改变近2周，医嘱查便潜血。7．病人应于检查前几天开始限制饮食，以防出现假阳性
A．1天 B．3天 C．5天 D．1周 E．2周 8．限制饮食阶段，下列食物中病人可食用的是
A．菠菜 B．鱼肉 C．猪肉 D．豆腐 E．鸭肝 9．应如何留取便标本
A．取少许粪便 B．取不同部位粪便 C．取黏液或中央部位粪便
D．取全部粪便，及时送检 E．用无菌棉签插入肛门深处取粪便
（三）B型题
(1—2题共用备选答案)A．乙醛 B．甲苯 C．甲醛 D．浓盐酸 E．稀盐酸 1．留24小时尿标本测17-羟类固醇含量时，应加入 2．留24小时尿标本测尿肌酐时，应加入(3—4题共用备选答案)A．取少许粪便 B．取不同部位粪便 C．取中央部位粪便
D．取全部粪便，及时送检 E．置于加温便盆内，连同便盆一起送检 3．采集便常规的标本应
4．采集服驱虫药后查虫体的便标本应
（四）X型题
1．以下需用抗凝管采血的是
A．血沉 B．甘油三酯测定 C．ALT D．APTT E．血气分析 2．采集血培养标本的做法正确的是
A．采集前检查培养基是否足够 B．为了防止培养基变质，应加入一定的防腐剂
C．采集后更换针头注入无菌培养瓶内 D．为了提高培养阳性率，一般取血量为10—15ml E．为了减少痛苦，可自静脉留置针处取血 3．尿常规检查的目的是
A．观察尿液颜色 B．测定尿比重 C．尿糖定性 D．尿蛋白定量 E．检查尿中有无管型 4．以下有关24小时尿标本留取的叙述正确的是
A．用于尿的定量检查 B．应留取清晨7点第#次排尿至次日晨7点的所有尿液
C．应放于清洁带盖的容器内小 D．留尿标本时如混入粪便，应及时滤去粪便
E．女病人在经期不宜留取 5．采集便培养标本应
A．置于无菌蜡纸盒内送检 B．取脓血或黏液部分粪便
C．取全部粪便，及时送检 D．将标本置于已加温的容器中送检 E．用无菌棉签蘸生理盐水由肛门插入6～7cm处蘸取少许粪便送检 6．采集痰常规标本的目的是
A．观察痰的颜色 B．检查细菌 C．检查虫卵 D．查癌细胞 E．计24小时痰量
7．下列有关痰培养标本的采集方法叙述正确的是 A．应于清晨，未进食前采集
B．先用朵贝尔溶液漱口，然后深吸气佣力咳出痰液
C．如昏迷病人可用吸痰法，集痰器开口高的一端接吸引器 D．如昏迷病人可用吸痰法，集痰器开口高的一端接吸痰管 E．取出后及时送检
8．咽拭子培养的分泌物，取自
A．舌面 B．咽部 C．扁桃体 D．双侧腭弓 E．双侧颊部 9．取咽部培养标本时，以下叙述不正确的是
A．先用清水漱口 B．用无菌长棉签蘸取 C．用力擦拭，取足量的分泌物
D．将棉签前端剪下置人试管中 E．消毒管口及塞子，盖紧送检 10．下列有关尿常规标本采集的叙述正确的是
A．采集晨起第一次排尿的尿液 B．留取中段尿 C．量约100m1 D．如会阴部分泌物较多，先清洁会阴 E．留置导尿病人可自集尿袋下方的引流口留取
11．24小时尿液标本中加入浓盐酸的目的是
采集植物标本 第3篇
1.去多少羊
慢羊羊村长刚宣布完,沸羊羊就大声问:“村长,明天我们要去多少羊呀?”
村长慢腾腾地说:“去的羊当中,老师羊数是最小的一位数;男生羊数:四个相同数的和恰巧与三个相同数相乘的积相等;女生羊数:两个相同数的和恰巧等于这两个相同数的积。沸羊羊,你说去多少羊?”
沸羊羊一时算不出来。你知道去多少羊吗?
2.有几种走法
就要出发了!慢羊羊村长仔细研究着地图,从大肥羊学校到森林里有好多路可走。只往前和左右方向走,一共有几种走法?哪几种走法所走路程较近呢?
3.采集标本
到了森林,慢羊羊村长将小羊羊们分为两组。
大家采集得可认真了,就连懒羊羊都没有偷懒。
慢羊羊村长和一组同学采集了18种标本,慢羊羊村长和二组同学采集了16种标本,一组和二组同学共采集了30种标本。
你知道羊羊们一共采集了多少种植物标本吗?
4.猎人的枪声
突然,一个猎人对着一只野鸭开了一枪,枪声惊动了在附近采集植物标本的羊羊们。喜羊羊、沸羊羊、美羊羊都说是自己最先发现猎人开枪的。
沸羊羊说:“我的耳朵最灵敏,枪声一响就听见了。”
美羊羊说:“我看见野鸭中弹从空中跌下来,所以,我是最先发现开枪的。”
喜羊羊说:“我是第一个发现开枪的,因为枪口刚一冒火花我就看见了。”
他们三羊争论不休,慢羊羊村长走过来,听了他们三人所说的理由,作出了是喜羊羊先发现开枪的结论。
请你想一想,慢羊羊说得对吗?
5.带个路吧
羊羊们嘻嘻哈哈地采着标本,慢慢地就迷失了方向。他们准备走回学校,就得朝西走。天上满是乌云,看不见太阳。他们又没有指南针,怎么知道哪个方向是西呢?
这时,又下起了小雨。小朋友,快帮个忙,给羊羊们指个路吧!
6.羊羊巴士过桥
羊羊们走出森林,天空还下着雨。慢羊羊村长提议:“咱们坐车回家吧。”这辆羊羊巴士长16米,每秒行12米,经过44米长的桥,要用多少时间?
羊羊巴士载着可爱的羊羊们回到了大肥羊学校。
采集植物标本之行,让小羊羊学到了好多知识。
标本采集时间 第4篇
关键词：标准操作程序,标本采集,护理服务,质量
临床标本采集的质量是检验结果准确性及有效性的重要基础,所以医院采用标准的临床样本采集操作程序对于确保诊断结果及后期治疗有着十分重要的意义[1,2]。科学技术和管理是社会发展的重要前进力量,科学的管理流程对于提高医院的医疗服务水平,保证人民身体健康具有重要的作用[3,4]。本研究对2013年1月~2013年12月本院的临床样本采集程序进行了调查研究,并对1200名患者住院期间的对护理服务水平的满意度进行调查分析,旨在观察临床标本采集标准操作程序对标本采集质量和护理服务质量水平影响。报道如下。
1材料与方法
1.1一般资料本研究对2013年1月~2013年12月本院的临床样本采集标准化程序进行调查研究,临床标本都抽取临床各个科室的患者,采样者都为有职业资格且有从业多年经验的专业护理人员,取样中所使用储存样本的试管均为全院统一够置BD有限公司生产的统一型号的负压试管。并且对1200名患者住院期间的对护理服务水平的满意度进行了调查分析。
1.2方法(1)对不合格标本的原因经由检验科相关人员对标本进行检查分析后,把样本与临床对应的科室进行校验核查,确认后进行登记退还标本具体原因,并对样本进行统计分析。(2)提高护理质量,详细告知患者的主要协调内容,包括:1样本在采集过程中及科学分析中的作用;2权利与保护;3对样本的保存与否,都不影响疗效,同时保密个人隐私,实施心理护理;4采样过程中,指导安全配合,顺利实施规范化操作采样;5对于良好的环境,有利于采样质量提高,实施病房管理与患者共同维护。
1.3观察指标本次研究对采集标本不合格率及护理人员护理患者满意度进行观察。
1.4统计学分析选择SPSS 18.0进行数据统计,计量资料采用±s来表示,采用t检验,P<0.05为差异具有统计学意义。
2结果
2.1标本不合格率比较分析本次研究对样品采集质量进行调查分析发现,7~12月份样品不合格率同1~6月相比明显低,差异显著,具有统计学意义(P<0.05)。7~12月每项检验类型的不合格率都低于1~6月的,间接说明标准操作程序的优势,其总的不合格率仅为0.23%。见表1。
2.2护理人员护理患者满意度调查分析本次研究对护理人员护理患者满意度进行调查分析发现,7~12月患者不满意度同1~6月相比明显下降,差异具有统计学意义(P<0.05)。7~12月患者满意度高达85%以上,充分表明患者对护理人员的各项护理的满意度在上升。见表2。
3讨论
本次研究运用新的操作理念、现代医学模式研究临床标本采集对象的生物[5]、心理和社会学要求,在采集研究过程中运用ISO的质量观的理念,提出临床标本采集对标本采集质量和护理服务质量水平影响及临床标本采集以最大限度地满足患者明确的、隐含的需要为更好地提高标本采集的质量和明确的诊断结果为目的,对临床标本采集标准进行改造和补充,建立标准的采集质量标准和操作流程,建立完善、科学的评价系统,从而对临床标本采集操作标准作出全面的评价。
标准化操作程序是检验整个标本采集质量与护理服务质量的核心组成部分[6],是临床检验相关科室人员的技术水平,也是保障检验结果可靠准确的首要前提。标本采集质量和护理服务质量的提高意味着相关检验人员的正确实施标本采集标准化操作程序[7]。本次研究对样品采集质量进行调查分析,发现7~12月患者样品不合格率同1~6月相比明显低;7~12月每项检验类型的不合格率都低于1~6月的,也间接说明标准操作程序的优势,其总的不合格率仅为0.23%。同时研究对护理人员护理患者满意度进行调查分析发现,7~12月份患者不满意度同1~6月患者相比明显下降。7~12月患者的满意度高达85%以上,充分表明患者对护理人员的各项护理的满意度在上升。
参考文献
[1]王志刚,李海峰,王爱华,等.医务人员微生物标本采集知识掌握的调查[J].中华医院感染学杂志,2013,23(22):5635-5637.
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标本采集手册 第5篇
1.目的 规范标本采集工作，保证标本符合试验要求。2.范围 适用于输血科所有实验项目的标本采集。3.职责
3.1.住院患者标本由医护人员采集并由专人送检，门诊患者标本由输血科人员采集。如果检验项目包括检验科项目时，由检验科人员采集，输血科专人定时取样；
3.2.输血科工作人员有义务向临床提供标本采集的类型、标本量、保存条件、注意事项及临床意义等；
3.3.检测后标本按照输血科标本保存和处理相关规定进行处理。4.工作程序 4.1.患者准备
4.1.1.临床医师必须对患者讲清楚检测的目的、采血时间(住院患者应在早晨卧床时采血；其他人员最好在空腹时采血，急诊除外)及相关注意事项； 4.1.2.临床医师应向患者讲清楚采集血液标本前，使用青霉素、非那西丁、氨基比林、磺胺、甲基多巴、肝素、右旋糖苷等药物可能会影响检验结果；临床医师若确认患者近期使用上述药物，应在申请单中注明或直接通知输血科工作人员，以利于试验结果的正确判断。
4.1.3.临床医师应嘱咐患者血液采集前避免跑步、骑自行车、爬楼梯等剧烈的运动，要求患者休息15min后进行采血。冬季采血时应保持血液循环通畅； 4.1.4.采血人员采血前应向患者作适当解释，以消除疑虑和恐惧。如遇患者采血后发生晕厥，可让患者平卧，通常休息片刻即可恢复。必要时可嗅芳香氨酊，针刺或指掐人中、合谷等穴位；
4.1.5.采血人员采血前准备好标本采集前所用的容器以及消毒器材、一次性采血针或注射器、检验申请单或输血申请单等备用；
4.1.6.打印标本条形码，并贴于真空试管上。无条形码时，应至少写明姓名、科室、ID号、采集日期、采集人于不干胶上，并黏贴于试管上。标本条形码上的申请单号（或申请序号）是原始标本的唯一标识。4.2.申请单的填写、处理及保存
4.2.1.临床医师在开具《临床输血申请单》时，应采用计算机程序进行申请。常规输血或手术备血时，申请单内容要完整。紧急输血患者可除外； 4.2.2.医护人员采集完血液标本后应在计算机标本采集程序中确认； 4.2.3.输血工作人员必须在收到临床医师电子打印的、信息完整的输血申请单或检验申请单时，方可接收标本并实施相应的检验； 4.2.4.《临床输血申请单》至少保存10年。4.3.标本采集要求
4.3.1.血型鉴定、交叉配血标本：静脉血2～3 ml，EDTA抗凝（紫色帽）。4.3.2.新生儿溶血症孕妇产前抗体效价检测标本：孕妇静脉自凝血（红色帽）3～5ml和EDTA（紫色帽）防凝血2～3 ml各一管；孕妇丈夫需静脉EDTA（紫色帽）防凝血2～3 ml。
4.3.3.新生儿溶血症血清学检测标本：静脉自凝血（红色帽）3～5ml和EDTA防凝血（紫色帽）2～3 ml各一管。
4.3.4.直接抗人球蛋白试验标本：静脉EDTA防凝血（紫色帽）2～3 ml，间接抗人球蛋白试验需自凝血（红色帽）3～5ml。
4.3.5.发生输血反应患者标本：静脉EDTA防凝血（紫色帽）2～3 ml，自凝血（红色帽）3～5ml与献血员血袋一起送回输血科。
4.3.6.血栓弹力图（TEG）检测标本：TEG-A 及TEG-B：枸橼酸钠抗凝管2.7ml（BD公司黑边蓝帽），TEG-C、D、E、F、G、H各需两管枸橼酸钠抗凝管2.7ml（BD公司黑边蓝帽）肝素抗凝管4.0ml（BD公司黑边绿帽）。4.3.7.输血科工作人员接收标本时，应检查标签信息是否完整，标本量、标本质量、抗凝剂是否符合要求，逐项核对正确无误后，填写《标本接收检查结果记录》，双方签名确认。
4.3.8.对不符合上述要求的血样应一律退回。4.4.标本采集方法
4.4.1.血液标本采集部位：通常采用肘部静脉，优先选择顺序是肘正中静脉、贵要静脉、头静脉；如肘部静脉不明显时，可改用手背静脉或内踝静脉，必要时也可从股静脉采血。儿童可用颈外静脉采血，但有危险性，以少用为宜。为保证检测结果准确不能在静脉输液同侧臂或输液三通处采集静脉血液标本；
4.4.2.真空采血法：采用真空采血装置(有软橡皮套管式止血装置)，穿刺回血后，即可将另一端的硬插管插入真空定量的采血试管内，血液足量后，拔出硬插管即止血。整个采血过程无血液外溢和污染；
4.4.3.注射器采血法：血管条件不好时，也可以采用注射器采血，采完后去掉针头，拔掉真空管塞，将静脉血沿试管壁缓慢注入试管内，重新塞紧试管塞。
4.5.标本采集注意事项
4.5.1.严格按照无菌技术操作，防止患者采血部位感染。保证一人一针，杜绝交叉感染。
4.5.2.静脉采血时，止血带压迫时间宜小于1min，若止血带压迫超过2min，大静脉血流受阻而使毛细血管内压上升，可有血管内液与组织液交流，影响检测结果；
4.5.3.抗凝管采集血液标本后，立即将试管轻轻颠倒5～6次，使血液与抗凝剂充分混匀；
4.5.4.采血时，应尽量避开水肿、血肿部位、输血同侧手臂、疤痕部位、动静脉瘘管或任何导管同侧手臂以及静脉输液同侧手臂。4.6.安全处置
4.6.1.意外情况的处理
4.6.1.1.针刺和切割伤：皮肤有损伤或针刺时，建议尽可能挤出伤口血液，用大量的水冲洗；然后用灭菌生理盐水彻底清洗伤口处，并用75%酒精溶液消毒；最后用防水的敷料包扎伤口；当皮肤损伤或针刺时，怀疑可能HIV、HBV、HCV感染，立即进行医疗处理采取有效的医学预防措施如立即注射乙肝疫苗。专家建议在4～6周后检测抗体，并周期性复查(6周、12周、6个月)，并上报有关部门；
4.6.1.2.眼睛、粘膜和皮肤污染的处理：如果被血液喷溅眼睛、粘膜，立即用大量清水或生理盐水冲洗15～20min；如果被血液喷溅皮肤，用肥皂液和流动水清洗污染的皮肤，再用75%酒精或0.5%碘伏进行消毒；怀疑接触HIV、HBV、HCV感染者的血液时，立即进行医疗处理采取有效的医学预防措施如立即注射乙肝疫苗。专家建议在4～6周后检测抗体，并周期性复查(6周、12周、6个月)，并上报有关部门。
4.6.1.3.溢出物的处理：处理溢出物必须采用适当的防护设施，常用的防护设施包括乳胶手套、口罩、防护眼镜、隔离衣等；患者标本污染环境时，用卫生纸将溢出物吸收，然后用有效氯1000～2000mg/L的消毒液擦拭消毒，必要时采用紫外线照射对环境进行消毒处理； 患者标本污染衣物时，尽快脱掉污染衣服以防止感染物触及皮肤并防止进一步扩散，将已污染的衣物进行适当的消毒处理。如果被患者标本污染的衣服触及皮肤时,应尽快脱掉污染衣服并进行淋浴；怀疑标本有传染性疾病，同时应采取有效的医学预防措施。
4.6.1.4.血液标本的运送必须保证运送过程中的安全，防止溢出。4.7.标本的接收与拒收的标准
4.7.1.实验室接收合格血液标本的标准
4.7.1.1.《临床输血申请单》应为电子格式（急诊患者除外），内容必须齐全，签字、审批符合程序；
4.7.1.2.血液标本标识应符合本手册要求，标本标识应与申请单的相应内容完全一致；
4.7.1.3.标本种类、标本量符合本手册的要求；
4.7.1.4.标本采集后应立即送检，TEG半小时内尽快送检，其它最迟不超过6h。
4.7.2.实验室拒收血液标本的标准
4.7.2.1.在一般情况下，血液标本不符合上述要求之一的，血液标本拒收； 4.7.2.2.标本凝血、溶血者拒收；
4.7.2.3.血液标本在运送过程中，容器破裂、标本外溢者，血液标本拒收； 4.7.2.4.接收不合格血液标本的说明:遇到休克、昏迷患者及婴幼儿等特殊情况时，血液标本不易采集，量不足，但离心后能够满足手工操作所需。这种情况下输血科工作人员必须与临床医护人员联系确认后，方可接收血液标本并检验，并在申请单上注明； 4.7.2.5.对不符合要求的血样应一律退回并及时通知临床医师或护士。4.7.3.废弃物的处理
4.7.3.1.损伤性废物：放入锐器盒。不把用过的锐利器具(注射器等)传递给别人；不要向用过的一次性注射器针头上套针头套，也不要用手毁坏用过的注射器；把用过的注射器直接放到专门的容器中，统一处理；勿将锐利废弃物同其它废弃物混在一起；勿将锐利废弃物放在儿童可以接触到的地方。
4.7.3.2.感染性废物：标本采集和检验过程中产生的感染性废物，装入黄色袋由物管人员处理；处理废弃物必须采用适当的防护设施，常用的防护设施包括乳胶手套、口罩、防护眼镜、隔离衣等。
4.8.血液标本的保存
4.8.1.输血科收到标本后应立即进行相关检测，如果暂时无法完成检测，可室温短期保存（不超过6h）。
略论细菌标本的采集 第6篇
1 标本采集注意事项
1.1
应在患者使用抗菌药物前或患者疾病早期、急性期、症状典型期采集标本。
1.2
采集标本时应严格无菌操作, 避免杂菌污染标本。
1.3
采集标本应适量, 标本量太多会造成运送不方便, 太少容易干燥, 影响检测结果。
1.4
标本采集后放入无菌容器中。
1.5
有些临床疾病, 采集标本时应注意采集时间和部位。如怀疑是伤寒的患者, 应在发病的第1周采集血液, 第2周采集粪便, 第3周采集尿液, 第1周~3周采集骨髓, 这样才会有较高的阳性率。
1.6
采集培养厌氧菌的标本要避氧。
1.7
检材容器贴上有患者姓名、标本名称等项目的标签, 化验申请单应按项目逐项填写。
2 标本的采集
2.1 血液标本的采集
血液标本应在患者发热1 d~2 d内或发热高峰时采集。在患者床头, 先点燃酒精灯, 再静脉取血5 m L, 立即在酒精灯的火焰上方注入10 m L双相液体增菌培养瓶内, 并迅速轻摇, 使血液充分混匀, 以防止血液凝固。
2.2 脓及创伤感染标本采集
(1) 应先用无菌生理盐水擦拭病灶周围, 再用无菌咽拭子采集标本。 (2) 一般用无菌咽拭子擦拭眼液及病灶深部的分泌物, 瘘管也可以无菌方法取组织碎片, 放入无菌试管内送检。 (3) 脓肿标本用无菌注射器抽出, 注入无菌试管内;也可以切开排脓时, 以无菌棉拭采取;也可将蘸有脓液的最内层敷料放入无菌平皿内送检。 (4) 放线菌的标本, 可用无菌棉拭挤压瘘管, 选取流出脓液中的“硫磺样颗粒”盛于无菌试管内送检, 或将灭菌纱布条塞入瘘管内, 次日取出放在无菌的平皿内送检。 (5) 厌氧菌感染的脓标本常有腐臭味, 采集和运送须注意两点:避免为正常菌群所污染及由采集至接种前尽量避免接触空气。标本送到实验室后2 h内应处理完毕, 以免其中需氧菌过度生长而抑制厌氧菌。如果不能及时接种, 可在室温下作短暂存留, 不要冷藏, 因为冷藏对某些厌氧菌有害, 且在低温时氧的溶解度较高。
2.3 咽拭、鼻咽拭标本采集
2.3.1
检查白喉杆菌时, 用棉拭子擦拭患者咽、鼻咽膜或假膜边缘部分的分泌物做直接涂片或分离培养, 如是局部病变或带菌者检查, 则应于咽部或扁桃体上擦拭。采取标本时, 应是患者面对亮光坐, 头部上仰、口张大, 用压舌板轻压舌根, 直接在组织深层及边沿缘部分采取, 避免触及舌、口腔黏膜与唾液, 以防污染。采取标本前数小时不可用消毒药物漱口或用药物涂抹病灶局部。
3.2.2
检查百日咳杆菌或脑膜炎球菌时, 应自鼻咽部采取标本, 可用无菌鼻咽拭 (一端弯成弧形的金属棉拭, 保护于无菌的空玻璃管内) , 由口腔进入伸向鼻咽部, 到达后咽壁涂擦取标本, 后将拭子缩入保护性玻璃管内, 从口腔取出。做百日咳患儿标本培养时可采用咳碟法。
2.3.3
检查麻风杆菌时, 采取鼻黏膜标本, 将棉拭用力擦拭鼻中隔部, 直至微有出血。
标本采取后一般应立刻送检。尤其是鼻咽拭子更应防止干燥。
2.4 痰标本采集
2.4.1
痰标本的采集一般采取患者清晨醒来咳出的第1口痰, 因为此时患者痰量多且浓稠有培养价值。
2.4.2
若患者痰量很少且咳出困难, 需要检查结核杆菌时, 应收集24 h痰液, 以提高阳性检出率。
2.4.3
做结核杆菌或真菌培养的痰液, 如不能立即接种, 应放入冰箱贮存, 以防杂菌生长。
2.4.4
支气管分泌物标本的采取应有专科医师用支气管镜直接从患者支气管内取出放入无菌试管内。
2.5 粪便标本采集
自然排便后, 应选取有脓血、黏液、絮状物的粪便放入带盖的盒内, 不要用卫生纸包裹, 以防其有效成分被吸干;液状粪便取絮状物, 盛于灭菌的广口瓶或蜡纸盒中, 及时送检和接种。在无法获取粪便时, 可用直肠拭子插入肛门内采取粪便或用戴无菌手套的食指和中指插入肛门掏出粪便。
2.6 穿刺液 (胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液、深部脓肿) 标本采集
各种穿刺液标本应由临床医师以无菌穿刺术抽取, 胸水、腹水抽取量一般约1~5 m L, 将所得穿刺液盛于含有无菌抗凝剂的试管或玻璃瓶中 (标本与抗凝剂的比例为1∶10) 送检。
2.7 尿液标本采集
2.7.1 门诊患者随即尿培养:
给患者无菌试管时, 嘱咐患者排出前段尿弃掉, 收集中段尿2~3 m L入内, 不要弄湿棉塞子即可。
2.7.2
取尿困难的患者, 可用导尿或膀胱穿刺等采尿方法收集尿液2~3 m L放入无菌试管即可。
2.7.3
取左右两侧的肾盂中尿, 应由泌尿科医师采取, 左右侧的标本须明确标记, 以免混淆。
2.7.4
淋球菌、伤寒杆菌及其他沙门菌的培养可取早晨第1次排尿收集于无菌试管内立即送检。
2.7.5
做结核杆菌时, 可收集24 h尿液, 将沉淀部分盛于洁净瓶内送检。
2.8 胆汁标本的采集
应由专科医师做十二指肠引流术采取之, 以无菌手法引流“乙” (即引流液第二部分) 10~15 m L, 盛于无菌试管内送检。如有胆囊炎、胆管炎, 手术时可直接从患处采集胆汁。
2.9 脑脊液标本采集
无菌方式采取脑脊液3~5 m L, 盛于无菌试管内, 注意保温 (30~37℃) , 立即送检。由于脑膜炎球菌离体后容易自溶, 流感杆菌及脑炎球菌也多死亡, 因此脑脊液标本采集后, 无论做涂片或培养, 必须立即送检。采集的标本若浑浊, 最好进行床边培养, 即患者床边抽取脑脊液后, 立即将0.5~15 m L直接滴入兔血琼脂斜面或巧克力血平板上立即保温送检, 否则影响结果。
医学标本的采集与管理 第7篇
关键词：医学标本,采集,管理
标本的收集与管理是医疗工作的重要一环, 我院处于一个少数民族地区 (主要有回族、东乡族、撒拉族、土家族, 以及周边地区的藏族等) , 由于语言不通给交流带来了困难, 这就需要我们医务人员在采集医学标本时耐心细致地向患者说明情况。此外, 在标本采集和管理的过程中无论采集标本或收集标本, 均需要严格查对姓名、床号、待测物、检验项目等, 避免标本张冠李戴, 因为一旦标本弄错了, 就会导致一连串错误, 这在严谨的医疗工作中是绝对不允许的。另外, 随着科学技术尤其是计算机技术的突飞猛进, 各种现代化的研究手段广泛应用于医学界。在医学检验中运用自动化检测仪器成为医学检验的一个必然的发展趋势。全自动仪器应用临床后, 检验的质量与速度都得到了显著提高, 为临床疾病诊断提供了一个快速准确的途径。但检验结果的高效准确取决于合格的标本, 两者密不可分。大量的临床资料表明, 在临床反馈不满意的结果中, 约80%的检验结果均可溯源到不合格的标本上, 这也进一步说明标本的管理与收集的重要性。
1 标本质量控制要义
基于医学标本的重要作用, 为了加强医学标本的质量控制, 要从源头抓起, 即从收集合格的标本入手。那么如何收集合格的标本, 这就需要我们医务人员相互支持、相互协作、相互理解、共同完成, 这是全面实行医院医疗质量及检验质量控制的重要前提。
在实际工作中, 我们首先需要了解各种客观因素对化验的影响, 争取最佳的化验结果。如进食后人体内一些成分的含量会发生改变, 出现诸如脂类和糖类明显升高、尿素和肌酐明显增高等体征;还要注意黄疸标本会使PAS假阳性, 溶血标本可使检验结果出现明显误差等;还有AST、LDH、ACP、NSE及钾的含量可能会随时间变化而产生误差, 因RBC中这些成分的含量高于血浆10~100倍, 一旦血清标本分离时间>60min, 就会影响NSE结果。因此有关影响检验结果的客观因素检验人员必须非常熟悉并能鉴别。我科为全院统一标本采集管理做了详细的说明, 现将各种标本与收集作了规定, 如表1所示。
2 讨论
随着科学技术突飞猛进的发展, 在构建和谐社会的大背景下, 构建和谐的实验室被提到了议事日程, 标本采集和管理因直接关系到医疗质量和构建和谐医患关系而倍受重视, 这就需要实验室工作人员在与临床科室充分沟通的基础上, 做到认真负责、严格管理, 具体如下:
(1) 血样标本测定完毕, 应在室温下保留至少1d, 以备临床医师对检验结果有疑惑时复查、核对。
(2) 脑脊液第1管可能含有少量穿刺引起的血液, 不宜作细胞计数, 可对第2管作细胞计数等检查, 采集的脑脊液还要立即送检。
(3) 行痰液检察时, 嘱患者留24h痰液于消毒瓶中送检, 连续3d;行微生物、PCR检查时, 嘱患者早上起床后先漱口深咳嗽第一口痰液于消毒瓶内送检, 痰液必须新鲜 (送检标本1h内处理, 以防细菌自溶) 。
(4) 尿液标本一般除随机尿外, 其余检查最好嘱患者留取中断尿, 尿量不少于30mL;女性应避开月经期, 并防止阴道分泌物污染。实验室工作人员、医生必须对病人留尿进行指导;如定时尿检查, 常用的有3h、12h及24h尿沉渣定量和尿化学成分定量测定, 气温高时还要注意加防腐剂。
参考文献
[1]李影林.中华医学检验全书[M].北京:人民卫生出版社, 1996.
[2]罗春丽.临床检验基础[M].北京:人民卫生出版社, 2004.
采集血液检验标本的体会 第8篇
1 了解和掌握不同真空管的用途
当前, 大多数医院除特殊检验项目外, 均采用真空采血管采血法, 因此, 采前应仔细阅读厂家说明书, 了解不同颜色采血管的用途及采血量, 严格按说明书要求进行操作, 使用前勿松动一次性真空管盖塞, 以防采血量不准。目前主要有红、黄、蓝、紫、黑五种颜色的真空管, 其中红盖管未加抗凝剂, 主要用于血样、免疫学检查、肿瘤标志物检查和狼疮细胞检查等;黄盖管加有分离胶, 主要用于需快速分离血清的检验, 如生化检验等;蓝盖管加有枸橼酸三钠抗凝剂, 用于血凝试验、凝血因子和D-二聚体的检查等;紫盖管加有乙二胺四乙酸二钾, 主要用于血细胞分析、糖化血红蛋白和疟原虫等检查;黑盖管也加有枸橼酸三钠抗凝剂, 专用于血沉检验。
2 尽可能避免一切干扰因素
由于患者的情绪、运动、生理节律变化、体位、饮食、药物等均对检验结果的正确性有一定的影响, 因此, 采血时尽可能避免这些干扰因素的影响。一般原则上, 在患者晨起、空腹、平静状态下取坐位或卧位采集静脉血液标本。
3 选择对诊断最有价值的采血时间, 尽可能避免一切干扰因素
如心肌梗死患者CK在发病后2～4h开始增高, 心肌肌钙蛋白在发病后4～6h开始增高;血淀粉酶在发病后8～12h开始增高, 12～24h达到高峰, 2～5d可降至正常水平。疟原虫检查和细菌培养在发烧高峰时采样较好;病毒性感染抗体检测在急性期和恢复期采取双份样本检查对诊断意义较大。
4 采取最合乎要求的标本
首先, 采取标本的量要符合要求, 如用于生化检验、免疫学检验和肿瘤标志物检验的标本一般应采取2～3ml的足够量, 而抗凝血必须要按抗凝剂的抗凝比例抽取准确量, 如用于血细胞分析的标本必须抽至2.0ml, 血凝和凝血因子检验必须准确采至3.0ml, 过多或过少均会影响检验结果的准确性。其次, 抗凝血在采取后应立即轻轻颠倒混匀, 止血带也不能绑扎时间太长, 一般不得超过1min。再次, 应防止标本溶血和过失性采样 (如采错部位、用错真空采血管等) , 杜绝在输液端边输液边采血。如果一次采血要求采取几个标本时, 应按以下顺序:血培养管、无抗凝剂及添加剂管、凝血象管、有抗凝剂 (添加剂) 管。
5 所采集标本应标明患者信息, 及时送检
所采集的标本必须用圆珠笔 (不可用钢笔或中性笔) 标清患者的科室、床号、姓名、病历号、标本的采集日期等详细信息, 及时送检。
6 特殊标本的采取
一些特殊检验项目, 如血气分析, 标本一定要用经肝素 (1ml=1000U, 用生理盐水配制) 完全湿润的2ml或5ml消毒注射器按无菌手术抽取动脉血2.0ml, 不能有气泡。抽出后用小橡皮封针头, 隔绝空气, 并将注射器放在手中双手来回搓动, 立即送检。而用于细菌培养的血液标本, 最好在使用抗生素治疗前或高烧时, 严格按无菌操作抽取10～20ml静脉血, 注入专用的增菌培养瓶中, 轻轻摇匀, 立即送检。
7 加强检验人员和医护人员的相互沟通与联系
不论是检验人员还是临床医生、护士, 对一些可疑结果应及时进行相互沟通与联系, 积极配合, 认真负责, 追溯采集和送检标本是否合格, 及时复检, 确保检验结果的准确性。
摘要：当前, 绝大多数医院的情况是医师开申请单、护士采集标本、检验人员对标本进行检测, 在这些过程的各个环节中, 缺乏统一的质量管理和监督, 各环节之间基本上处于互相过问少, 相对“独立”进行的状态, 这样送检标本不符合要求的现象时有发生, 造成检验结果的质量难以保证。笔者通过多年的临床实践, 认为只要采集血检标本时注意了解和掌握不同真空管的用途, 严格按操作规程进行操作, 尽可能避免一切干扰因素, 选择对诊断最有价值的采血时间, 加强检验人员和医护人员的相互沟通与联系等几个方面, 就可采集符合要求的标本, 确保检验结果的准确性。
关键词：血液,正确采集,检验标本,抗凝剂
参考文献
标本采集时间 第9篇
1 资料与方法
1.1 一般资料
收集我院从2011年2月到2011年11月这段期间, 各科室的住院患者进行采集血液做血液细胞学、免疫以及生化检查的1100份血液标本作为此次研究的对象, 全部的检验标本都是由临床护理人员进行采集和送检的。
1.2 方法
检验师要严格按照血液检验的标准, 负责接受检验标本的认真检查和核对, 及时检查血液标本有无凝血、溶血、标本量少、脂血、抗凝剂选择不正确以及标本错误等现象, 判定血液标本是否是合格的, 对于不合格的血液标本要进行准确的记录, 标明血液样本不合格的原因, 并通知相应的临床科室对其进行重新采集合格的血液标本, 探讨正确采集检验标本的方法[1]。
1.3 统计学方法
对资料的中的所有数据均应用SPSS16.0统计学软件对资料进行统计学分析, 对计量资料应用χ2检验, 以P<0.05为差异表示有统计学意义。
2 结果
2.1 我院共收集了1100份血液标本, 其中血浆标本为2 9 0份 (26. 4%) , 血清标本640份 (58.2%) , 全血标本170份 (15. 4%) 。
详细结果如表1所示, 其中有120份的血液标本不合格, 占总血液标本的10.9% (120/1100) 。
2.2 不合格的原因
采血量不正确29份, 所占比例为26.4% (29/110) ;标本容器选择不正确13份, 所占比例为11.8% (13/110) ;标本溶血45份, 所占比例为40.9% (45/110) ;错用抗凝20份, 所占比例为18.2% (20/110) ;凝固3份, 所占比例为2.7% (3/110) 。详细情况如表2所示。
3 讨论
为了能够确保血液标本的合格率, 必须掌握正确采集检验标本的方法, 其具体的方法如下:
3.1 选择合适的采集时间和采血部位
对患者进行采血的时间一般是在早晨空腹时, 保持患者处于一个平静的状态, 避免干扰因素的影响;选择患者贵要静脉或肘部正中静脉, 不宜选取过细的血管, 不能在输液管道和输液肢体采集血液样本[2]。
3.2 避免标本、凝血、溶血错误
不能将每次采集的样本放在同一个抽血管中;扎止血带的时候不能过劲, 时间<1min;抽血管内不得有气泡;采集的血液样本需要沿着抽血管壁流入;在进行抗凝血血液标本的时候, 要认真控制抗凝剂与采血量的比例, 加入抗凝剂之后要均匀震荡容器;要保持容器和注射器的清洁、干燥, 避免溶血时无机磷、血清钾的升高[3]。
摘要：目的 分析检验血液标本不合格的原因, 探讨正确采集检验标本的方法。方法 对我院从2011年2月到2011年11月这段期间, 各科室的住院患者进行采集血液做血液细胞学、免疫以及生化检查的1100份血液标本作为此次研究的对象, 进行严格的质量标准检查, 以判定血液标本质量, 对于不合格的血液标本要进行准确的记录, 标明血液样本不合格的原因, 以探讨正确采集检验标本的方法。结果 共收集了1100份血液标本, 其中血浆标本为290份 (26.4%) , 血清标本640份 (58.2%) , 全血标本170份 (15.4%) 。其中有120份的血液标本不合格, 占总血液标本的10.9%。其中不合格的原因:采血量不正确29份, 所占比例为26.4%;标本容器选择不正确13份, 所占比例为11.8%;标本溶血45份, 所占比例为40.9%;错用抗凝20份, 所占比例为18.2%;凝固3份, 所占比例为2.7%。结论 正确采集血液标本是确保血液检验结果准确、真实的根本保证。因此, 我们必须要加大标本质量的监管力度, 严格规范采集检验标本的行为, 保证检验标本流程的完整性与准确性, 确保检验标本的可靠性, 降低不合格检验标本的比例, 为临床医生提供准确的、可靠的诊断依据, 从而进一步提高医疗质量。
关键词：血液标本,不合格原因,正确采集
参考文献
[1]赵立民, 容桂荣, 欧镔进, 等.数字技术在护士血液标本采集质量培训中的应用[J].护士进修杂志, 2009, 24 (19) :1745-1746.
[2]白忠荣.检验标本11647份不合格原因分析[J].中国误诊学杂志, 2009, 9 (10) :2404.
标本采集时间 第10篇
摘 要：海洋经济生物标本是高校、科研院所从事相关海洋生物学教学与研究的重要材料。以藻类、鱼类、贝类、甲壳类等为例，提出标本采集前应明确的几个问题，阐述了海洋经济生物标本采集方法、制作流程、药品配制、科学保存和维护技术等。
关键词：海洋经济生物标本；采集；制作；保存
中图分类号：Q9 文献标识码：A
海洋生物标本是研究海洋资源和生态方面的重要实验材料和实验对象，是海洋生物学、水产养殖学及其他相关学科教学、科研、科普等的基础，同时一件制作精美的生物标本也是一个有价值的工艺美术品，具有很高的观赏价值。海洋生物标本的采集、制作和保存技术已成为相关学科教学科研中的一个重要环节。针对某种水生生物标本的制作和保存技术有较多的论述[1-8]，但海洋生物有其自身的特性，并且种类繁多，不同种类，其标本制作和处理的方法亦不相同，并且其标本的采集有自身的要求，本文就一些具代表性的海洋藻类和动物的采集、制作及保存技术进行阐述。
1 海洋生物的采集
海洋生物采集是标本制作的基础，海洋生物具有独特的生活环境、生活习性，因而采集之前首先要明确下述几个问题。
1.1 选择好采集地点
了解所采集海洋生物资源的分布情况，海洋生物地域分布特征比较显著，不同海域、同一海域深海区、浅海区、近岸带、潮下带、潮间带、潮上带分布不同的生物，只有掌握了其分布的情况，才能做到有的放矢。
1.2 选择好采集时间
很多海洋生物生活都具有季节性，不同季节和水温海洋生物处于不同的生长阶段，比如要采集繁殖期的生物样本首先要了解其繁殖季节，尤其对于海洋藻类而言，水温升高导致其成体死亡，只能通过孢子度夏，当水温降低到其适宜的时候才会萌发生长，并且多种海藻类其幼体和成体的形态差别比较大，所以采集时间的选择非常重要。海洋生物资源的采集不但注意季节的变化，还要注意潮汐的变化，一是因为不同的海洋生物生活在水深不同的海区，潮汐的变化影响采集的难易程度，二是潮汐的变化影响出行的时间。
1.3 了解采集对象生活和生理习性
不同的海洋生物生活习性有很大的不同，比如一些微藻類在水层的分布情况，是营浮游生活还是底栖生活，贝类是固着还是掘洞生活等。另外，一些海洋生物人接触后有毒害作用，采集前要做好防范措施。
1.4 配备合适的采集设备和工具
根据不同海洋生物生活环境和生活习性配备不同的采集设备和工具，一些海洋生物生活在较深的水层，需要有潜水人员和潜水器材，一些海洋生物固着或掘洞生活，采集需配备合适的工具，深海海域生活的海洋生物采集要随船而行。
1.5 不同种类的采集
1.5.1 海藻标本采集 海藻大多生活在潮间带，所以一般选在每月最低潮时采集。采集前要准备大量的工具，李宝华[1]等采集的工具是海藻采集中所通用的。采集时首先要选择完整的藻体，海藻多数营固着生活，都有一个固着基，采集时用刀、铲、镊子等把藻从固着基上取下来。采集过程中要保持固着基的完整，如果是藻类繁殖季节，应选择有生殖器官的藻体，而且注意雌雄都要采集。采集时注意观察海藻的自然生态，对各种海藻的生长基质、潮位、周围环境、海水温度以及海藻的数量等都要进行祥细记录。
1.5.2 贝类标本采集 贝类大多数生活在潮间带，在退潮后可以下海采集，一是可以在沙滩采集潮水推上来的贝壳，二是可以用工具采集一些生活的贝类，如附着在岩石、珊瑚礁上面的贝类，凿穴生活的种类等。一些在远海游泳的头足类，可以随船出海采集或在市场购买。
1.5.3 鱼类、甲壳类标本采集 一些有经济价值的鱼类和甲壳类大多可在市场购得，其他一些游泳种类可以随船出海，利用各种渔具捕捞。一些穴居的种类可以潜水采取，在潮间带生活的蟹类可以直接抓取，潮间带掘穴生活的种类通过工具挖掘采集。
1.5.4 其他海洋生物的采集 这里主要指腔肠动物、棘皮动物、星虫动物门、环节动物门等。海绵动物成体全部营固着和附着生活，多数附着于水中的岩石、贝壳、水生植物或其他物体上。腔肠动物门水螅、珊瑚多数固着生活，水母是浮游生活。环节动物沙蚕、星虫生活在潮间带，棘皮动物海参、 海胆、海星等营底栖生活。可根据每种海洋生物的习性进行采集。
需要指出的是，海洋生物标本采集过程中，要注意对生态和环境的保护。采集样品不能过于频繁，不能一次把某地的样品都采干，要保留繁殖的成体，保护好幼体。采集时要做好详细记录，分类保存，对每种标本要编号，记录采集日期、产地、水温气温、种名、色泽、生活环境和习性等。
2 海洋生物标本的制作
生物标本的制作方法主要有6种：浸制法、干制法、剥制法、虫蚀法、剔除法、整装制片法[9]。前4种都是海产经济生物标本制作常用的方法。
海洋生物标本制作之前首先要选择完整的标本，然后用洁净的海水清洗干净，浸制法固定时最好用海水，这样有利于标本的保存。标本体积一般不超过固定液容量的1/2～2/3，整个标本固定好后体积不超过容器的2/3。
2.1 海藻标本的制作
海藻标本的制作有两种方法，一是浸制法，二是干制法即腊叶标本法。
2.1.1 浸制标本制作 S浸制法根据不同的藻类采用不同的固定液：褐藻和蓝藻采用海水95%，甲醛 5%；绿藻采用海水80%，甲醛5%，酒精10%，饱和硫酸铜5%；红藻为海水75%，甲醛5%，酒精10%，饱和硫酸铜5%，亚硫酸5% 。固定液配置好后倒入标本瓶中，海藻标本瓶一般用各种规格的大口瓶。李宝华等[1]建议在上述溶液内加少许小苏打，以中和福尔马林分解出的乙酸。少数重要标本可加1%的甘油，以防止固定液蒸发而引起的组织破坏。
2.1.2 腊叶标本的制作 首先准备好各种制作工具，如各种规格解剖盘、镊子和毛笔、吸水纸、纱布、用重磅道林纸裁剪不同规格的标本纸、标本夹、硫酸纸等。
制作中首先要根据标本大小选好标本纸，在纸背面右下角按照标本的标注方法（包括采集时间、地点、采集人、学名等）用铅笔做好记录，解剖盘中放入海水，把标本纸放入解剖盘中，取完整清洗干净的标本放入解剖盘，用镊子和毛笔把海藻在标本纸上展开整理好，沿着解剖盘的边缘轻轻拉出标本纸，此时海藻是通过水黏贴在标本纸上的，把拉出的标本纸放在适当厚度的吸水纸上，上面盖上纱布，然后再盖上吸水纸，以此类推，做多几张标本后用标本夹把一沓标本夹住，用绳子绑上固定，上面压以重物，每天更换吸水纸，并把吸水纸晒干，经过一个星期左右腊叶标本即做好。
腊叶标本做好后要进行整理，有些标本含有胶质可以黏贴在标本纸上，有些不能粘在纸上，可用适合大小的透明胶黏住。然后在每张标本上覆以硫酸纸保护。
2.2 贝类标本制作
2.2.1 浸制标本的制作 贝类的浸制标本可用5%福尔马林固定液，或70%酒精固定液。对于观察外形的贝类可以直接把贝类投入浸制液中，对于要观察触角、腹足的贝类，则需要首先把贝类麻醉，使其伸展身体，将采集到的贝类标本置入盛海水的容器中，待其充分伸展后，用1%硫酸镁麻醉后倒出海水，用10％的甲醛溶液将其杀死后，移入固定液中保存[10]。章鱼、乌贼等头足类可放入淡水中杀死，洗净污物，整理好它们的腕足后即可浸制保存。一些个体较大的贝类，为了防其腐烂，需要注射5%甲醛后再进行固定保存。
2.2.2 干制标本的制作 贝类干制标本是指去除贝类内脏后以贝壳的形式保存标本。对于直接采集的贝壳，清洗干净晾干后，可以直接分类放入标本瓶中。对于活的的贝类，可以通过水煮法取出贝肉和内脏，清洗干净晾干后分类保存在标本瓶中。有厣的贝类，应将厣取下和壳一起保存。
2.3 鱼类标本制作
鱼类标本制作有浸制法、剥制法 、骨骼法。浸制法一般保存小型的标本，剥制法和骨骼法一般保存较大的鱼类标本。
2.3.1 浸制法 浸制法用10%的甲醛或75%的酒精做保存液保存鱼类标本。首先需对标本进行清洗整理，去除体表、口腔、鳃等部位的污物及粘液，然后对鱼体进行整理，使鱼体保持自然平整姿态。一般稍大些的鱼要进行注射10%甲醛溶液，防止内脏腐烂，注射部位为腹腔及背部的肌肉，待这两部分变硬以后可以把鱼放入固定液中保存即可。
2.3.2 剥制法 剥制法即把鱼类的皮肤剥下来，通过一定的工艺展现它们生活时的体态。剥制法主要有以下几个步骤：①首先要选择新鲜、完整无损的健康鱼。②观察并记录活体鱼的外观、颜色、性别等，并用相机拍摄。测量鱼的全长、体长、体高、头长、吻长、眼径、尾柄长、体围等。③皮肤的剥离。在剥皮时应根据各种鱼类不同的形态，采用不同的切口线，尽量减少和缩短切口线[2]。一般选择在鱼类腹部中线切口，小心剔除肌肉、脂肪、内脏和骨骼，注意不要伤到皮肤，保持鳞片和鳍条的完整。④脱脂及防腐处理。为了去除不易剔除的脂肪组织，用棉花蘸取次氯酸钠饱和溶液均匀地涂于鱼皮内表面进行脱脂[3]，防腐一般用樟脑、明矾等制成粉末涂抹于鱼皮的内侧。⑤装置。用钢丝、竹、棍等做假体支撑材料，以棉花、稻草等材料填充好后进行缝合。目前也有一些新的工艺做填充材料，用拌好的石灰泥在鱼的表面涂自然晾干后，用刀从中间线竖切开石灰壳取出鱼，然后再向石灰壳内放入适量的发泡剂，合住石灰壳．过一定时间后打开石灰壳，将发泡剂去除即可[11]。⑥定型修饰，根据剥制前拍摄的活体照片，调整鱼的姿态．然后检查鱼体各部分，如有不合适的地方，可用手稍加矫正，装上相似的玻璃球作为眼睛即可。
2.3.3 骨骼法
2.3.3.1 选材 首先要选择个体大、年龄大、新鲜的鱼。
2.3.3.2 热处理 制作骨骼标本，必須要去掉皮肤和肌肉、内脏，保留骨骼和鱼鳍。处理时用开水煮烫材料，便于剔除肌肉和鱼皮肤，把水烧开，并保持沸腾状态，将鱼躯干部分浸入沸水中，先烫一侧，2 min后再烫另一侧，最后将整条鱼全部浸在水中，约1 min后捞出。
2.3.3.3 剔除肌肉 按照先躯干部，再尾部，最后处理头部和鱼鳍的顺序剔除肌肉。肌肉处理干净后，用洗洁精清洗并用自来水冲洗干净后自然风干。
2.3.3.4 脱脂处理 用95%酒精浸泡一定时间后取出自然晾干，如果骨骼仍然发黄。继续用97号汽油辅助再脱脂［4］。
2.3.3.5 整形装架 标本自然风干后，把脱落的骨骼用胶水粘好并整理，对于大型的骨骼标本要用支架固定定型。
2.4 甲壳类标本制作
2.4.1 浸制法 浸制前首先要把甲壳类麻醉或杀死，防止直接放入甲醛溶液固定时出现附肢自切现象。可用少许氯仿或乙醚放入盖盖的容器中麻醉半小时，或投入淡水中杀死，然后用10%甲醛溶液固定即可。
2.4.2 干制标本制作 个体较大的甲壳类可采用此法。方法是将10 % 的甲醛注入动物体内, 接着放入10 % 的甲醛液中浸泡6～10 h,最后晾晒干燥即可。
2.5 其他常见海洋生物标本的制作
腔肠动物和棘皮动物、星虫动物、环节动物一般采用浸制法。此类动物一般有触手或可以伸缩，为防止其身体固定时收缩，先放入新鲜海水中使其恢复自然状态，以1%的硫酸镁溶液麻醉后，用7%的甲醛将其杀死，然后移入10%的甲醛固定液中保存。
海星、海胆类动物也可制成干制标本，先把动物整形，然后放入10%甲醛固定液中浸泡6～12 h，晒干即可。
一些超大型海洋动物如鲸类、 鲨鱼类，可以制成骨骼标本或剥制标本。骨骼标本在制作过程中，对于个体大、难以处理的可采用截段的方法，一般截为3段4部分，分为头骨段、胸椎段、尾椎段以及附骨，进行处理后，再把骨骼按顺序串制[4]。剥制标本参照鱼类剥制标本制作方法。
3 海洋生物标本的保存
3.1 标本馆室的建立
为了保存好生物标本，应当建立标本馆室。标本馆室应当防晒、防霉、防腐、防潮、通风。对于标本较少，不具备建馆条件的，可建立标本室，同样要达到以上要求。对于标本种类繁多的，可建立标本馆。标本馆一般要求较低的温度和湿度，有人员流动的温度一般在18～20 ℃，没有工作人员在内工作的标本馆内应保持13～15 ℃，相对湿度控制在40%～50%时最佳[5]，可以通过安装一些设备达到以上要求。挥发的固定液及标本散发的腐败气味对人体有害，因而标本馆室要安装通风设备。
随着科技的发展，一些大型的标本馆建立了多媒体演示系统，对陈列的标本进行多视觉、全方位的多媒体演示。使用现代电子科技技术，发挥声电效果的作用，能够更好地展示生物标本的动态和背景效果，强化陈列展示内容，化平淡、单调、枯燥为生动、神奇，丰富人们的感官享受[12]。
3.2 标本的保存与维护
标本入库之前首先要建立档案，记录采集地点、制作时间，进行分类鉴定，确定学名，根据其分类地位和学名制作标签并贴好。标本的陈列一般是根据其分类系统进行排列的。凡属新种的模式种、稀有种和国家保护的一、二级物种，均应设置一专门区域展示或馆藏。
标本保存过程中要经常进行维护，对于浸制标本，要及时更换或添加保存液，以防标本露出保存液而干坏或腐烂；对于藻类腊叶标本，要保管在干燥、密封的标本柜中，入柜前要进行分类，并贴上标签，便于查找。柜内要放入樟脑等防虫剂。并做到经常更换防虫剂。一些较大或大型的干制标本、剥制标本和骨骼标本主要进行防霉工作，日常管理时应注意定期用福尔马林、高锰酸钾熏蒸或涂抹。以达到防霉的目的。
4 结语
海洋经济生物种类繁多，以上介绍的海洋生物标本的采集、制作、保存技术是目前最常用的方法，但上述的每种方法都有其不完善性。如海藻浸制标本容易褪色，对于海藻标本保色研究不多，可以借鉴植物标本保色方法进行研究[13]，随着科技的进步，目前有一些新的标本保存技术，如制作鱼类透明骨骼标本[14]、利用透明水溶性树脂包埋生物标本[15]、制作塑化标本[16-17]等，海洋生物标本制作保存可以借鉴这些方法，以完善海洋生物标本的制作保存技术，更好地发挥标本在实验教学、科学研究、学术交流、科普教育、文化传播等方面的作用。
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Sampling, processing and preservation of specimens
of marine economic organisms
ZHOU Yin
________________________________________
huan1, HUANG Hai
________________________________________
li2
(1.Fisheries College of Guangdong Ocean University，Zhanjiang 524088,China;
2 .Zhanjiang center for Marine Technology, Guangdong Ocean University，Zhanjiang 524025, China )
Abstract：Marine organism specimens are important teaching and study materials for universities and institutes researchers on marine biology. In this paper, several proposals on sampling preparations of algae, fish, shellfish, crustaceans,etc were suggested. And sampling methods, processing procedure, drug preparation, conservation and preservation of marine organism specimens were also expounded.
Key words：marine economic organism specimens; sampling; processing; preservation
动脉血标本采集部位选择 第11篇
1 资料与方法
1.1 一般资料
本组318例, 男176例, 女142例, 年龄16~92岁。股动脉组204例, 桡动脉组81例, 足背动脉组33例。
1.2 采血方法
1.2.1 采血前常规测体温
将2ml的浓肝素 (12500U/ml) 加入100ml的生理盐水瓶中, 混匀。5ml的注射器抽取肝素稀释液充分湿润内壁。常规消毒皮肤及操作者左手食指、中指指尖并固定动脉搏动处, 右手持准备好的空针刺入动脉, 见鲜红色血液回至血气针所需标本, 迅速拔出针头, 采血量为2~3ml。拔针后立即将针头刺入事先准备好的小橡皮塞中, 封闭针头, 两手搓动注射器数次以使血液与肝素充分混匀避免凝血, 然后注明患者体温并立即送检。同时无菌干棉球按压穿刺部位5~10分钟, 防止血肿发生。
1.2.2 血管选择
选用搏动明显且无相应侧肢体感染、动静脉栓塞及其他疾患的股动脉、桡动脉或足背动脉。告知患者采血目的及采血方法取得配合, 消除紧张心里, 避免各种因素致呼吸过度或屏气而引起的血气误差[2]。
1.2.3 各部位采血法
1.2.3. 1 股动脉采血法
自腹股沟中点至收肌结节连线的上2/3为股动脉的体表投影。患者平卧, 术侧大腿外展和旋外位, 操作者可于腹股沟韧带 (髂前上棘与趾骨结节体表连线位置) 中点触及股动脉搏动[3]。
常规消毒穿刺部位及操作者左手食指、中指及无名指, 右手持针在股动脉搏动最强处大于45°或垂直进针, 注射器乳头见回血后即停止刺入待采集量足够后迅速拔针并准确按压穿刺点。
1.2.3. 2 桡动脉采血法
患者根据病情取平卧位或半坐卧位, 将上臂自然外展, 腕部伸直, 掌心向上, 常规消毒皮肤及操作者的左手中、食指, 右手持针以搏动明显部位向心方向穿刺, 穿刺角度与皮肤表面呈10°~30°。注射器乳头见回血后即停止刺入待采血量足够后迅速拔针并准确按压穿刺点。
1.2.3. 3 足背动脉采血法
患者取卧位或坐位, 将患者脚掌自然下压, 使足背绷紧, 足背动脉通过处即足背内外踝中点。选择搏动最强处, 穿刺时应将针头与皮肤呈15°~20°角进针, 注射器乳头见回血后即停止刺入待采血量足够后迅速拔针并准确按压穿刺点。
1.3 采血注意事项
采血前了解患者有无经血传染的疾病, 做好保护措施。严格无菌操作, 采血前向患者解释、沟通, 消除紧张心里取得合作。选择合适的血管, 动作轻柔, 操作熟练。必须用稀释后的肝素液湿润注射器, 且将肝素液及空气排空。采血完毕后立即排出针管内空气并将针头刺入橡皮塞;重压穿刺部位5~10min, 有出血倾向者应延长压迫时间直至确无出血方可松手离开。血标本须注明患者体温立即送检。吸痰后20min方可采集血气标本, 这时体内血气和酸碱值达平衡状态。
2 结果
一次性穿刺成功率, 股动脉组94%, 桡动脉组78%, 足背动脉组82%。血肿发生率, 股动脉组10.0%, 桡动脉组5.0%, 足背动脉组3.0%。皮肤瘀青发生率, 股动脉组11%, 桡动脉组5%, 足背动脉组2%。
3 体会
股动脉因其血管粗大血流丰富搏动明显, 穿刺时易于定位, 一次性穿刺成功率高, 对于病情危重血容量不足等患者常常作为首选部位。但股动脉由于位置较深, 对于腹水、脂肪肥厚者较难以触摸到, 肺心病、哮喘患者需取半卧位, 不利于股动脉穿刺;穿刺需要遮挡患者, 脱去内裤, 充分暴露穿刺部位, 部分患者难为情, 不利配合, 故暴露准备采血部位所需时间较长。桡动脉位置表浅故进针角度小、贴近桡骨而易压迫止血, 方便观察。足背动脉取血标本既可卧位又可坐位, 平卧时足与心脏处于同一高度, 故血液的压强相同;坐位时足背动脉水平低于肱动脉水平, 足背动脉内所受压强明显增高[4], 则更加容易触到足背动脉的搏动。桡动脉及足背动脉采血不受环境及体位限制, 动脉非常表浅, 易接触, 便于观察, 操作方便, 能减少血肿发生及皮肤瘀青, 患者容易接受;暴露准备采血部位无需耽误时间, 但桡动脉和足背动脉的管腔细小, 搏动感较股动脉弱, 周围循环衰竭或休克者压力较低, 回血量不足, 一次性穿刺成功率较低。
4 总结
在临床上, 动脉采血用于血气分析已经是非常常见的一项技术操作, 因此需要护理同仁们加强基本功训练, 熟悉各动脉的解剖位置, 熟练掌握动脉采血的操作方法。而选择股动脉、桡动脉、足背动脉穿刺采血各部位各有优缺点, 需对患者当时的全身情况和局部情况全面评估, 灵活选择采血部位以提高工作效率, 减少误差, 减轻患者痛苦, 从而有效的减少护士的操作时间, 为抢救患者生命赢得更多的时间。
摘要：目的 探讨血气分析动脉血标本采集的部位选择, 提高护士的工作效率。方法 对从股动脉、桡动脉、足背动脉采血的成功率、血肿发生率、皮肤瘀青发生率等进行比较。结果 选择股动脉、足背动脉、桡动脉三个部位采血各有优势。结论 在抽取动脉血标本选择采血部位时, 应评估患者当时的全身情况及局部情况, 灵活选择, 提高动脉采血成功率, 减少误差, 提高工作效率, 减轻患者的痛苦。
关键词：血气分析,动脉血标本采集
参考文献
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